在活细胞生理环境下直接验证药物与靶点的特异性结合,是药物研发从体外筛选走向临床转化的关键环节。细胞热位移分析技术(Cellular Thermal Shift Assay, CETSA)突破传统分子互作技术依赖纯化蛋白、脱离生理环境的局限,实现活细胞及组织内靶点蛋白-配体相互作用的直接、原位、定量检测。
CETSA技术基于配体结合改变蛋白质热稳定性的核心原理,实现活细胞内靶点蛋白-配体相互作用的直接检测。蛋白质在生理温度下维持天然构象,当温度升高时会发生热变性、聚集并沉淀;而当靶点蛋白与特异性配体(药物、小分子、多肽等)结合后,其构象稳定性显著提升,热变性温度(Tm)向高温方向偏移。
技术通过梯度加热处理细胞/组织样本,使未结合配体的靶点蛋白发生热变性沉淀,而结合配体的靶点蛋白保持可溶性;随后通过离心分离可溶性蛋白与变性沉淀,利用Western Blot、质谱或荧光定量等方法检测可溶性靶点蛋白的含量,绘制热位移曲线(Melting Curve),计算Tm值偏移量(ΔTm),从而定量评估配体与靶点在活细胞内的结合亲和力与特异性。
在靶向KRASG12C的小分子药物研发中,采用CETSA技术验证药物与靶点的细胞内结合。结果显示药物处理组Tm值较对照组提升6.8℃,且呈现浓度依赖性,EC50=125nM,明确药物在活细胞内特异性结合KRASG12C靶点。
采用MS-CETSA技术筛选中药活性成分黄芩苷的潜在靶点,对肝癌细胞进行药物处理与全蛋白质组热位移分析,共鉴定出18个发生热位移的蛋白。
有限蛋白酶解-质谱联用(LiP-MS)是结构蛋白质组学领域非标记、高通量、原位构象解析核心技术,通过蛋白酶K温和酶切与高分辨质谱定量,实现复杂体系中蛋白质构象动态与相互作用的精准表征。
LiP-MS以蛋白质构象决定酶切可及性为核心:天然态下,蛋白质表面柔性区域易被广谱非特异性蛋白酶K(PK)快速切割;当蛋白与小分子结合、发生翻译后修饰或蛋白-蛋白相互作用时,局部构象收紧/舒展,改变切割位点暴露程度,形成特征性肽段丰度差异。
技术路径:温和有限酶切→完全酶解→肽段富集→LC-MS/MS定量→构象差异肽段筛选→靶标与位点解析。不依赖化学修饰、无需蛋白纯化,原位保留生理构象。
小分子处理细胞后,LiP-MS筛选出12个显著构象变化蛋白,经共纯化、SPR、分子对接验证,确证2个全新靶标,命中率提升40%,周期缩短60%。
临床组织样本中,鉴定23个疾病特异性构象肽,构建诊断模型,AUC=0.92,优于传统丰度标志物(AUC=0.78)。
LiP-MS/CETSA非标记法钓靶技术示意图
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